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beta cell-specific Tcf7l2 knockout mouse (RIP2.Cre-ER T2, tamoxifen-inducible)

Beta-cell Tcf7l2 knockout mice on normal or high fat diet displayed normal glucose tolerance when glucose was introduced by the intraperitoneal route.

结局指标

以血糖浓度对时间作图得到完整血糖-时间曲线,并可计算曲线下面积(AUC)反映葡萄糖清除程度;当各受试对象基线血糖不同时应比较高于基线的幅度或曲线下面积,而非仅比较单一终点值。该检测反映葡萄糖负荷后的整体清除,不等同于胰岛素作用的直接测量。

实验动物

实验步骤

提前一周单笼饲养 实验前一周将小鼠改为单笼饲养。 称量体重 逐只称量小鼠体重,用于按体重计算给糖体积。 禁食6小时 禁食六小时(06:00:00)。 测定基线血糖 禁食结束后,先用血糖仪测定血糖作为基线。 腹腔注射葡萄糖 按2 g/kg体重腹腔注射葡萄糖:将2 g D-葡萄糖溶于10 ml生理盐水配成20%葡萄糖贮备液,按每克体重10 ul给予。 系列采血测定血糖 于注射葡萄糖后15、30、45、60、90和120分钟采集血样,用血糖仪测定血糖。

模型身份

模型名称
beta cell-specific Tcf7l2 knockout mouse (RIP2.Cre-ER T2, tamoxifen-inducible)
物种
mouse
基因型/合子状态
Tcf7l2 floxed exon 10 with tamoxifen-inducible RIP2.Cre-ER T2

生物学特性

适用研究问题
Whether beta cell-specific Tcf7l2 deletion reproduces the islet phenotype implied by human GWAS.
模型局限
Inducible deletion plus intraperitoneal challenge can mask secretory defects; a normal IPGTT does not exclude beta-cell dysfunction seen by other tests.

实验方法

实验方案

  • 小鼠腹腔注射葡萄糖耐量检测(IPGTT)

    本方案给出小鼠腹腔注射葡萄糖耐量检测(IPGTT)的具体操作:实验前一周单笼饲养,称量体重,禁食6小时并测定基线血糖,按2 g/kg体重腹腔注射20% D-葡萄糖溶液,随后于注射后15至120分钟系列采血测定血糖。用于评估肥胖与糖代谢相关模型的葡萄糖清除能力。

配套试剂与材料

参考文献

  1. T2D risk gene function in mouse models: Tcf7l2 and SLC30A8/ZnT8 review (PMID:23710470)
  2. Roberta Marongiu, Sabina Marciano. Glucose Tolerance Test, Version 2. protocols.io record 98408, 2024-04-18. https://doi.org/10.17504/protocols.io.261geddodv47/v2
  3. Standard operating procedures for describing and performing metabolic tests of glucose homeostasis in mice. Disease Models & Mechanism (2010), PMID 20713647, DOI 10.1242/dmm.006239
  4. ARRIVE 2.0 官方规范