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6-OHDA 损伤帕金森样模型(大鼠,文献参考)

6-OHDA 经对流增强递送造成纹状体损伤,可出现进行性、广泛的黑质多巴胺能神经元退变:达到广泛损毁标准时黑质神经元丢失超过 80%、纹状体多巴胺下降超过 95%,并伴稳定的安非他命(每分钟超过 6 次)与阿扑吗啡(每分钟超过 4 次)诱发旋转行为;损毁后第 1 周黑质神经元凋亡标志物达峰。

结局指标

以荧光显微镜在脑切片中观察TH阳性胞体与纤维并采集图像;本方案输出为免疫荧光染色与成像结果,不包含体视学细胞计数、纤维密度阈值或纹状体多巴胺浓度测定。

实验动物

脑切片酪氨酸羟化酶(TH)免疫荧光染色
年龄
来源未报告周龄
组织
脑(黑质与纹状体)
脑切片酪氨酸羟化酶(TH)免疫荧光染色
年龄
来源未报告周龄
组织
脑(黑质与纹状体)

实验步骤

脑切片洗涤 用4% PFA/PBS洗涤脑切片一次。 去除固定液 以轻柔摇动或旋转5分钟,确保彻底去除固定液。 PBS漂洗 用PBS短暂漂洗,去除残留PFA。 封闭液配制 配制含10%驴血清和0.3% Triton-X的PBS封闭液。 封闭 室温下将切片在封闭液中孵育1小时,以减少非特异性结合。 均匀封闭 将切片置于摇床或旋转器上,使切片均匀接触封闭液。 一抗工作液配制 按下列组成配制一抗工作液。 加入鸡抗TH一抗 鸡抗TH抗体(Abcam,货号ab76442)。 稀释一抗 用含2.5%驴血清和0.3% Triton-X的PBS将一抗按1:200稀释。 一抗孵育 切片与一抗在室温孵育1小时。 湿盒孵育 在湿盒中孵育,防止液体蒸发。 一抗后洗涤 用PBS洗涤切片三次,每次5分钟。 轻柔洗涤 洗涤过程中保持轻柔摇动或旋转。 二抗孵育 与针对鸡IgG的荧光偶联二抗按1:1000在室温孵育1小时。 避光 避光以保护荧光。 终末洗涤 用PBS洗涤切片三次,每次5分钟。 避光洗涤 在避光条件下完成洗涤,以维持荧光完整性。 贴片 将切片贴于包被载玻片上。 Mowiol封片 用Mowiol封片介质覆盖切片并加盖玻片。 干燥 避光干燥至少30分钟后再成像。 荧光显微镜成像 使用Leica DM6000 B显微镜和10×物镜观察切片。 选择滤光片 使用合适的荧光滤光片组检测二抗信号。 调整曝光 调整曝光设置以优化信噪比。

模型身份

模型名称
6-OHDA 损伤帕金森样模型(大鼠,文献参考)
物种
rat
NCBI Taxonomy ID
10116

生物学特性

适用研究问题
多巴胺能通路损伤后进行性退变的机制;神经保护与功能代偿策略的临床前研究。
模型局限
文献参考模型,不代表公司实际保有、供应或质检;毒素损毁范式不等同于帕金森病完整病因学;纹状体局限注射的损伤常因存活神经元的自发再生而受限,进行性广泛退变要求毒素在纹状体充分广泛分布;黑质神经元死亡相对损伤时间存在滞后(凋亡标志物于损毁后 1 周达峰),结局评定的时点选择直接影响结论。

实验方法

实验方案

  • 脑切片酪氨酸羟化酶(TH)免疫荧光染色

    脑切片经4% PFA/PBS洗涤、10%驴血清/0.3% Triton-X封闭后,以鸡抗TH抗体ab76442(1:200)和抗鸡IgG荧光二抗(1:1000)孵育,Mowiol封片并以荧光显微镜成像,用于TH阳性胞体与纤维的定位观察。

  • 脑切片酪氨酸羟化酶(TH)免疫荧光染色

    脑切片经4% PFA/PBS洗涤、10%驴血清/0.3% Triton-X封闭后,以鸡抗TH抗体ab76442(1:200)和抗鸡IgG荧光二抗(1:1000)孵育,Mowiol封片并以荧光显微镜成像,用于TH阳性胞体与纤维的定位观察。

配套试剂与材料

参考文献

  1. Oiwa Y, Sanchez-Pernaute R, Harvey-White J, Bankiewicz KS. Progressive and extensive dopaminergic degeneration induced by convection-enhanced delivery of 6-hydroxydopamine into the rat striatum: a novel rodent model of Parkinson disease. J Neurosurg. 2003;98(1):136-144. DOI:10.3171/jns.2003.98.1.0136; PMID:12546362. 原文在大鼠6-OHDA模型以形态学标准定义黑质细胞丢失>80%,并报告纹状体多巴胺下降>95%。
  2. NCBI Taxonomy record 10116: Rattus norvegicus (brown rat), rank species.
  3. Marta Graziano, Ioannis Mantas, Konstantinos Meletis. Immunohistochemistry for Tyrosine Hydroxylase (TH) Detection in Brain Sections. protocols.io, v1, 2025-02-20. DOI:10.17504/protocols.io.6qpvr9jwpvmk/v1. Protocol status: Working; License: Creative Commons Attribution License.
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  5. Sundström E, Strömberg I, Tsutsumi T, Olson L, Jonsson G. Studies on the effect of 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine (MPTP) on central catecholamine neurons in C57BL/6 mice. Comparison with three other strains of mice. Brain Res. 1987;405(1):26-38. DOI:10.1016/0006-8993(87)90986-3; PMID:2882814. 原文以TH免疫组化显示MPTP处理后C57BL/6小鼠黑质致密部多巴胺能胞体减少70%、纹状体DA纤维近乎完全丢失。
  6. Sauer H, Oertel WH. Progressive degeneration of nigrostriatal dopamine neurons following intrastriatal terminal lesions with 6-hydroxydopamine: a combined retrograde tracing and immunocytochemical study in the rat. Neuroscience. 1994;59(2):401-415. DOI:10.1016/0306-4522(94)90605-X; PMID:7516500. 原文在大鼠纹状体6-OHDA损伤后以TH免疫反应细胞计数显示黑质TH阳性细胞进行性减少。
  7. Huang et al. Therapeutic Effects of Noninvasive Electrical Stimulation in Combination Transplantation of Human Adipose-Derived Stem Cells-Derived Dopaminergic Neuron on the Monkey Model of Parkinson's Disease. MedComm. 2026. DOI:10.1002/mco2.70595. Sections 4.1 and 4.13 document cynomolgus monkeys and Abcam ab76442 with anti-chicken fluorescent secondary in brain sections.
  8. ARRIVE 2.0 官方规范