组织病理切片染色
用于观察组织形态与病变,例如动脉粥样硬化研究中的斑块组织切片染色。
从组织切片染色到免疫组织化学,观察模型组织的病理变化。
用于观察组织形态与病变,例如动脉粥样硬化研究中的斑块组织切片染色。
免疫组织化学检测,用于观察目标标志物在组织中的分布。
通过 qPCR、ELISA 与 WB 检测,分析基因表达及蛋白相关指标。
定量 PCR 分析,用于检测目标基因的表达。
酶联免疫吸附分析,用于检测样本中的目标蛋白。
蛋白免疫印迹检测,用于分析目标蛋白的表达。
结合模型研究中的转录组信息,分析组织与细胞的分子变化。
从单细胞层面分析基因表达,适用于阿尔茨海默症模型等研究中的海马组织分析。
具体样本要求、检测范围、交付形式与当前承接情况需结合研究项目确认。
测定对象为反转录产物中目标序列的实时扩增量,原始观测为循环阈值(Cq),需经扩增效率校正后转换为可比较的目标量。
方案是方法的具体实例,明确指标、样本、检测步骤与质量控制;相关技术服务单独关联。
版本 3
本方案采用 protocols.io 的天狼星红组织学染色 v1。石蜡包埋组织切片经脱蜡水化、可选磷钨酸预处理与 Weigert 苏木素核染色后,用 0.1% 天狼星红 F3BA/饱和苦味酸溶液染胶原,再经乙酸分化、脱水透明和封片。胶原在明场呈红色并在偏振光下呈双折射;本方案描述染色与显微观察,不把染色本身表述为完整的纤维化面积或分期定量。
版本 3
本方案采用 protocols.io 的 qPCR v1 中 SYBR Green 分支,输入为预先生成的 cDNA(每孔 10 ng),不包含 RNA 提取或反转录步骤。反应使用 PowerUp SYBR Green Master Mix 与正反向引物,在 LightCycler 480 系统按 50˚C 2 min、95˚C 2 min、95˚C 15 s + 60˚C 1 min 共 40 个循环扩增,读取 CT 并用 ΔΔCT 法分析。方案不指定具体基因、引物序列或疾病模型读数。
版本 2
本方案采用 protocols.io 的胰岛素耐量试验 v1。小鼠禁食 4–6 小时后称重,按 1–1.2 U/kg 腹腔注射胰岛素,于注射前及注射后 15、30、60、90、120 分钟测定血糖。检测方法为葡萄糖测定(OBI:2100020);胰岛素给药、剂量和时点属于本具体方案条件,不把本方案表述为 OBI 的精确胰岛素耐量试验词条。
版本 2
本方案采用 protocols.io 的口服葡萄糖耐量试验 v1。小鼠禁食 4–6 小时后称重,按 1 g/kg 经口灌胃给予 50% 葡萄糖溶液(高脂饮食 4 周以上按 0.5 g/kg),于负荷前及负荷后 15、30、60、90、120 分钟测定血糖;部分时间点同时采集尾静脉血制备血浆用于胰岛素测定。方案描述检测安排,不包含具体疾病模型的实验结果。
版本 5
本方案用于固定、石蜡包埋组织切片(4 μm)的苏木素-伊红(H&E)染色:经脱蜡、复水、苏木素核染、返蓝、伊红复染、脱水透明与封片七个步骤,使细胞核呈蓝紫色、细胞质与结缔组织纤维呈粉红色,供光学显微镜下观察组织中细胞与整体结构形态。
版本 3
固定后主动脉经清洁、剖开、铺针与含标尺成像,由 Image Pro 软件分区描记内膜与斑块并测量病变面积,定量经第二观察者盲法复核。
版本 3
本方案给出小鼠腹腔注射葡萄糖耐量检测(IPGTT)的具体操作:实验前一周单笼饲养,称量体重,禁食6小时并测定基线血糖,按2 g/kg体重腹腔注射20% D-葡萄糖溶液,随后于注射后15至120分钟系列采血测定血糖。用于评估肥胖与糖代谢相关模型的葡萄糖清除能力。
版本 1
石蜡包埋肾组织切片经二甲苯脱蜡、梯度酒精复水、0.5%高碘酸氧化、Schiff试剂显色、苏木素复染、返蓝、脱水透明与Cytoseal封片后,用20x明场扫描成像。
版本 1
本方案以加速转棒测定小鼠的运动协调、平衡与运动学习:仪器设置加速时程 00:05:00,转速上限 50(仪器默认 80)、下限 5;每只动物每天测定 4 次、连续 4 天,每组最多 5 只、单次运行最多 4 组,试次之间间隔约 15–20 min;试次以动物跌落压板或连续完成两转终止,当日 4 次试次的平均时间与平均转数作为该动物当次读数;试次间以 70% 乙醇清洁棒面。
版本 1
本方案用于固定、石蜡包埋组织切片(4 μm)的苏木素-伊红(H&E)染色:经脱蜡、复水、苏木素核染、返蓝、伊红复染、脱水透明与封片七个步骤,使细胞核呈蓝紫色、细胞质与结缔组织纤维呈粉红色,供光学显微镜下观察组织中细胞与整体结构形态。